penyakit pada ayam

aeka penyakit pada ungas

Abstrak
Infeksi Laringotrakeitis (ILT) merupakan penyakit pernapasan yang penting ayam dan setiap tahunnya menyebabkan kerugian ekonomi yang signifikan di industri unggas di seluruh dunia. Virus ILT (ILTV) milik Alphaherpesvirinae dan herpesvirus Gallid 1 spesies. Transmisi ILTV adalah melalui pernapasan dan mata rute. Tanda-tanda klinis dan post-mortem dari ILT dapat dipisahkan menjadi dua bentuk sesuai dengan virulensi. Karakteristik bentuk parah adalah lendir berdarah dalam trakea dengan kematian yang tinggi. Bentuk ringan menyebabkan nasal discharge, konjungtivitis, dan mengurangi berat badan dan produksi telur. Konvensional polymerase chain reaction (PCR), nested PCR, real-time PCR, dan loop-dimediasi amplifikasi isotermal dikembangkan untuk mendeteksi sampel ILTV dari burung alam atau eksperimental terinfeksi. PCR dikombinasikan dengan polimorfisme panjang fragmen restriksi (RFLP) dapat memisahkan ILTVs menjadi beberapa kelompok genetik. Kelompok-kelompok ini dapat memisahkan vaksin dari jenis liar virus lapangan. Vaksinasi merupakan metode umum untuk mencegah ILT. Namun, lapangan isolat virus dan vaksin dapat membangun operator laten terinfeksi. Menurut hasil PCR-RFLP, ILTVs lapangan virulen dapat diturunkan dari vaksin dimodifikasi-live. Oleh karena itu, vaksin pengembalian diubah-live memberikan sumber untuk wabah ILT di peternakan ayam. Dua baru-baru ini berlisensi vaksin ILT rekombinan komersial juga digunakan. Kandidat vaksin rekombinan dan gen-kekurangan lainnya berada dalam tahap perkembangan. Mereka menawarkan harapan tambahan untuk mengontrol penyakit ini. Namun, dalam ILT daerah endemik, meningkatkan biosekuriti dan praktek manajemen sangat penting untuk meningkatkan kontrol ILT.

Kata kunci: Infeksi virus ILT, Infectious Laringotrakeitis, Gallid-herpesvirus 1, reaksi berantai polimerase dikombinasikan dengan polimorfisme panjang fragmen restriksi, vaksin rekombinan Laringotrakheitis
Pergi ke:
BIOLOGI UMUM INFEKSI VIRUS Laringotrakheitis
Infeksi Laringotrakeitis (ILT) adalah anggota dari Herpesviridae, genus Iltovirus dan Gallid herpesvirus 1 spesies [1-3]. Ini pertama kali dilaporkan pada tahun 1920; Namun, penyakit ini mungkin telah ada pada ayam jauh lebih awal [4]. Genom virus ILT (ILTV) adalah linear dan diperkirakan 150 kb DNA beruntai ganda. Ini terdiri dari wilayah yang unik panjang dan pendek (UL, AS) dan dua urutan terbalik berulang (repeat internal; ulangi terminal) yang mengapit wilayah AS. Sebuah urutan genom lengkap dirakit dari ILTV dari strain yang berbeda mengandung 148 pasang 665 basa, dan konten G + C dari 48,16%. Diperkirakan bahwa genom memiliki 77 frame baca terbuka (ORFs), dan 63 di antaranya adalah homolog dengan herpes simplex virus-1 gen [1-5]. Baru-baru ini, 2 kelompok penelitian menggunakan metode tinggi-throughput yang kuat untuk urutan panjang penuh vaksin dan ILTVs virulen. Kelompok Australia sequencing genom lengkap dari 3 ayam-embrio asal (CEO) vaksin, yang regangan Eropa, Serva, dan 2 strain Australia, SA2 dan A20. Genom dari tiga vaksin CEO memiliki identitas 99%, dan beberapa polimorfisme nukleotida tunggal diidentifikasi. Namun, virulensi berbeda antara SA2 andA20 ILTVs [6,7]. Sebuah kelompok penelitian Amerika sequencing urutan lengkap dari 4 strain virulen dari genotipe yang berbeda, dan membandingkannya dengan strain Serva dan urutan komposit. Vaksin dan ILTVs virulen adalah 150, 335-153, 633 pasangan basa dengan 80 diperkirakan ORFs. Mereka sangat dilestarikan dan hanya 4 ORFs berbeda panjang dan 13-49 asam amino berubah [8]. Urutan ini genom penuh kontribusi terhadap pengetahuan lebih lanjut dari faktor virus patogen, fungsi gen, dan pengembangan vaksin. Meskipun ILTV, virus penyakit Marek, dan virus herpes kalkun (HVT) milik Alphaherpesvirinae, baik urutan nukleotida atau urutan asam amino dideduksi dari glikoprotein D dan ICP27 adalah serupa. Menurut analisis kekerabatan, ILTV bisa menjadi tipe awal dari α-herpesvirus [9,10].

ILTV adalah virus yang terbungkus dan sensitif terhadap panas, eter, kloroform, dan pelarut lipolitik lainnya [11]. Strain yang berbeda dari ILTV memiliki ketahanan yang berbeda terhadap panas. Pada suhu yang lebih rendah, ILTV mempertahankan infektivitas untuk jangka waktu lama. Virus ini bertahan selama berhari-hari sampai berbulan-bulan pada 13-23 ° C dalam eksudat trakea dan ayam bangkai [12]. Ketika disimpan pada suhu -20 ° C sampai -60 ° C, ILTV adalah layak selama berbulan-bulan sampai bertahun-tahun. Media penyimpanan yang mengandung gliserol atau susu skim steril sangat meningkatkan infektivitas dalam trakea swab [13,14]. Telah terbukti bahwa virus itu hancur dalam 1 menit dengan diobati dengan 3% kresol atau larutan alkali 1% [11]. Di sebuah peternakan ayam, 5% hidrogen peroksida kabut diberikan dengan peralatan fumigasi benar-benar tidak aktif ILTV [15].

Host dari ILTV

Segala usia ayam yang terkena, tapi ayam tua dari 3 minggu yang paling rentan terhadap ILTV [16]. Telah terbukti bahwa ILTV dapat menginfeksi burung, salib burung-bantam, dan merak [17]. ILT dapat menginfeksi kalkun sekitar 100 d usia. Tanda-tanda klinis dari dyspnea dan depresi dapat diamati pada kalkun yang terinfeksi [18]. Spesies unggas lainnya adalah tahan terhadap infeksi ILTV [17,19,20]. Embryonating telur ayam adalah metode yang paling umum untuk menyebarkan ILTVs. Dalam embrio ayam, ILTV membentuk plak pada membran chorioallantoic (CAM). Plak dapat diamati 48 jam setelah infeksi, dan embrio dapat mati dalam 2-12 infeksi d post (PI). Alunan ILTV menunjukkan ukuran plak yang berbeda dan morfologi pada CAM [21-24]. ILTV dapat diisolasi dalam kultur sel primer, seperti hati embrio ayam (CEL), ginjal embrio ayam (CEK), dan ginjal ayam (CK) kultur sel. Sensitivitas ILTV isolasi dan propagasi dari sampel lapangan bervariasi tergantung pada jenis kultur sel. CEL adalah yang paling sensitif untuk isolasi, diikuti oleh CK. The CEK dan embrio ayam sel paru-paru kurang sensitif. Fibroblas embrio ayam, sel Vero, dan sel puyuh tidak memuaskan untuk isolasi utama ILTV. Limfosit, thymocytes, dan sel T diaktifkan tidak sensitif terhadap infeksi ILTV [24-26].

Transmisi dan infeksi laten: transmisi Alam ILTV adalah melalui pernapasan dan mata rute atas. Sumber ILTV secara klinis ayam yang terkena dampak, operator terinfeksi laten, debu yang terkontaminasi, sampah, kumbang, air minum dan fomites [13,27,28]. Penelitian terbaru kami menunjukkan bahwa ILTV dapat tetap biofilm dari saluran air minum dan kemudian dikirimkan ke burung rentan. Biofilm adalah zat lengket yang dihasilkan oleh bakteri, yang dapat menyebabkan resisten terhadap beberapa pembersih rutin digunakan mikroorganisme. Sodium komersial hidrogen sulfat (perlakuan pH air, PWT ®, Jones-Hamilton Co, Walbridge, OH) dan hidrogen peroksida (Proxy-Clean ®, Kanters Produk Khusus Amerika Serikat, St Paul, MN) mampu menonaktifkan ILTV dalam air baris [27] (Tabel (Table1) .1). DARKLING kumbang di peternakan ayam merupakan sumber mungkin untuk mengirimkan ILTV. Investigasi kami menunjukkan bahwa di ILTV terinfeksi kandang ayam, kumbang yg mulai gelap mengandung virus hidup setidaknya 42 hari setelah wabah penyakit [28] (Tabel (Tabel 2) .2). Sumber-sumber penularan lain termasuk anjing, gagak, dan kucing [29]. Terbawa angin transmisi antara peternakan sangat penting untuk ILTV spread [30]. Asal kultur jaringan (TCO) dan vaksin CEO menjabat sebagai model untuk transmisi ILTV serta replikasi melalui tetes mata rute. Virus direplikasi terutama di konjungtiva dan trakea. Virus vaksin dapat kembali diisolasi dan DNA virus dapat dideteksi dari kontak terkena burung sedini 7 hari setelah paparan [31].



Tabel 1
Tabel 1
Isolasi virus dari usap pada spesifik patogen-bebas telur embryonating setelah perawatan pembersih
Tabel 2
Tabel 2
Infeksi virus Laringotrakeitis isolasi dari kumbang di spesifik patogen-bebas embrio
ILTV dapat bertahan dalam unggas yang terinfeksi. Virus ini dapat kembali diisolasi dari swab trakea 7 wk PI, atau 2 mo PI dalam sampel trakea. Ganglion trigeminal adalah target untuk ILTV latency. Lima belas bulan setelah vaksinasi, ILTV di ganglion trigeminal diaktifkan kembali. Pada ayam petelur dewasa ditantang dengan ILTV virulen, DNA terdeteksi di ganglion trigeminal oleh polymerase chain reaction (PCR). The ILTV DNA dapat dideteksi dalam ganglion trigeminal pada 2 hari setelah burung divaksinasi melalui tetes mata rute. Ketika burung stres, seperti timbulnya awam atau re-perumahan, ILTV telah diaktifkan kembali dan menyebar ke unggas rentan [31-33].

Tanda-tanda klinis dan lesi: Ada dua bentuk klinis infeksi ILT (berat dan ringan). Tanda-tanda klinis dari bentuk parah termasuk dyspnea dan lendir berdarah. Formulir ini dapat menyebabkan morbiditas dan mortalitas yang tinggi hingga 70% [13,34]. Bentuk ringan meliputi depresi, mengurangi produksi telur dan berat badan, konjungtivitis, pembengkakan sinus infraorbital (mata berbentuk almond), dan nasal discharge. ILT membutuhkan waktu 10 sampai 14 hari untuk pemulihan, tetapi dengan beberapa strain tanda-tanda klinis dapat memperpanjang selama berminggu-minggu [35]. Bentuk ringan adalah jenis yang paling sering terlihat di AS dan disebut "silent, vaccinal, atau almond-bentuk mata" ILT.

Lesi bruto diamati dalam laring dan trakea. Dengan bentuk parah, mukosa dari saluran pernapasan menunjukkan peradangan dan nekrosis dengan perdarahan. Sebuah fitur karakteristik adalah badan inklusi intranuklear pada sel epitel. Badan inklusi umumnya hadir selama beberapa hari pada tahap awal infeksi sebelum sel-sel epitel mati. Sel epitel juga membentuk sel berinti (syncytia). Ketika sel-sel epitel nekrotik terlepas dari trakea, lendir berdarah diamati [35,36].

Deteksi dan identifikasi ILTV

Diagnosis laboratorium diperlukan untuk ILT, karena penyakit lain menyebabkan tanda-tanda klinis yang serupa dan lesi, seperti bronkitis menular, penyakit Newcastle, flu burung, coryza menular, dan Mycoplasmosis. Infeksi ILTV dapat dikonfirmasikan dengan menggunakan beberapa metode, termasuk virus isolasi dan deteksi DNA. Sebuah ELISA komersial untuk mendeteksi antibodi terhadap ILTV tersedia; Namun, tes ini tidak digunakan untuk diagnosis laboratorium rutin. Untuk ILTV isolasi, inokulasi CAM dari 9-to-12-tua d-embrio dan kultur sel primer yang digunakan. Swab atau organ sampel dari trakea, konjungtiva, laring, dan paru-paru burung klinis terkena dikumpulkan dan diinokulasi pada CAM. The CEL dan sel CK budaya yang cocok untuk ILTV isolasi. Sel raksasa berinti dapat diamati 24 jam PI [24,35].

Deteksi antigen tradisional menggunakan ILTV poliklonal atau monoklonal antibodi untuk mengikat antigen ILTV dari sampel klinis. Viral antigen dideteksi menggunakan antibodi fluorescent langsung atau tidak langsung (FA) dalam trakea smear atau trakea jaringan [37]. Sebuah metode yang lebih sensitif menggunakan immunoperoxidase (IP) berlabel antibodi monoklonal dapat digunakan sebagai immunoprobes untuk mendeteksi ILTV di pap trakea. Metode IP ini terdeteksi ILTV pada PI hari kedua [38]. Gel imunodifusi agar menggunakan hyperimmune serum terhadap ILTV untuk mendeteksi antigen dalam sampel trakea dan dapat membedakan ILT dari bentuk difteri dari cacar unggas. Namun, sensitivitas lebih rendah dibandingkan dengan metode lain [39]. Antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay (AC-ELISA) menggunakan ILTV antibodi monoklonal untuk deteksi antigen. AC-ELISA lebih cepat dan lebih akurat daripada AGIP atau FA [40].

Metode deteksi DNA ILT telah berkembang pesat dalam beberapa tahun terakhir. Metode-metode ini dapat mengidentifikasi ILTV cepat, akurat, dan sangat sensitif. Teknik molekuler untuk deteksi ILTV termasuk probe DNA kloning untuk dot-blot hybridization, PCR, PCR, real-time PCR, PCR multipleks, hibridisasi in situ [41-49], dan PCR diikuti dengan polimorfisme panjang fragmen restriksi (RFLP) [43 ,50-52]. Deteksi ILTV dengan PCR lebih sensitif dibandingkan isolasi virus dalam kultur sel dan mikroskop elektron. PCR juga terdeteksi ILTV dalam sampel, yang terkontaminasi dengan patogen lain [53]. Dibandingkan dengan mikroskop elektron, tes histologis, isolasi virus melalui CAM rute, tes FA, dan real-time PCR untuk diagnosis ILT dalam wabah peternakan broiler, real-time PCR adalah metode yang paling sensitif untuk ILTV deteksi [54]. Karena banyak laboratorium tidak diatur untuk real-time PCR; FA, histopatologi, dan PCR adalah metode yang paling sering digunakan digunakan untuk diagnosis rutin ILT [54].

Baru-baru ini, kami mengembangkan metode baru deteksi asam nukleat, amplifikasi isotermal lingkaran-dimediasi (LAMP), untuk identifikasi ILTV DNA dan membandingkan sensitivitas dan spesifisitas dengan real-time PCR. Kedua metode yang sangat spesifik dan sensitif. Uji LAMP dapat mendeteksi ILTV DNA pada konsentrasi 60 kopi / uL di 45 menit tanpa peralatan mahal dan reagen. The real-time PCR memiliki batas deteksi pada 10 eksemplar / uL [55]. Uji LAMP cocok untuk deteksi laboratorium diagnostik dasar di lapangan dan real-time PCR dapat digunakan untuk verifikasi lebih lanjut.

ILTV diferensiasi regangan

Hal ini tidak mungkin untuk mengidentifikasi strain yang berbeda dari ILTV dengan metode serologis, karena ILTVs telah dekat imunodominan domain [56]. Metode molekul yang paling umum dan efektif untuk ILTV diferensiasi adalah PCR diikuti oleh RFLP. Analisis PCR-RFLP daerah genom virus tunggal atau ganda dapat membedakan strain dari berbagai wilayah geografis dan vaksin dari strain lapangan [43,57-60]. Analisis restriksi endonuklease dari DNA ILTV dapat membedakan strain vaksin dari strain tipe liar [61]. Selain itu, analisis PCR-RFLP gen parsial ICP4, gen gC, dan gen TK dapat membedakan strain lapangan dari vaksin. Namun, beberapa isolat virulen tidak dapat dipisahkan dari strain vaksin [43]. Han et al [62] (2001) menganalisis beberapa gen dengan PCR-RFLP dikombinasikan dengan analisis urutan DNA dari gen gG dan TK untuk membedakan vaksin dan non-vaksin strain. Para peneliti menunjukkan bahwa beberapa gen PCR-RFLP lebih dapat diandalkan untuk membedakan vaksin dari strain lapangan [50]. Sebuah metode RFLP terbalik baru dilaporkan untuk memisahkan vaksin dari non-vaksin strain ILTV. Metode ini dikombinasikan real-time PCR kuantitatif dan pembatasan enzim pencernaan dan menghitung perubahan nilai angka siklus threshold antara dicerna dan tidak tercerna DNA template untuk memeriksa genotipe ILTVs [63].

Oldoni et al [51] (2007) menyelidiki ILTV isolat dari unggas komersial yang dikumpulkan antara 1988 dan 2005 menggunakan beberapa gen analisis PCR-RFLP (ORFB-TK, ICP4, UL47/gG, dan gM/UL9). Mereka mampu memisahkan ILTVs menjadi sembilan kelompok genetik. Kelompok I dan II terdiri referensi regangan USDA dan strain vaksin TCO. Kelompok isolat IV identik dengan strain vaksin CEO, sedangkan kelompok V isolat, yang satu pola PCR-RFLP berbeda dari strain vaksin CEO adalah isolat CEO terkait. Kelompok VI, VII, VIII, IX dan adalah lapangan strain ILTV dengan jenis genom berbeda dari CEO dan vaksin TCO. Kelompok-kelompok ini juga menunjukkan isolat yang berbeda berdasarkan patogenisitas. Dalam laporan itu, sebagian besar ILTV isolat unggas positif terkait dengan strain vaksin [51]. Oldoni et al [52] pada tahun 2008 diselidiki 46 ILTV bidang isolat dikumpulkan di Amerika Serikat 2006-2007. Setelah beberapa analisis genotipe PCR-RFLP, banyak isolat mirip dengan strain vaksin [52]. Menurut laporan tersebut, sebagian besar lapangan ILTV isolat di AS mungkin berasal dari vaksin pengembalian. Diferensiasi vaksin dari virus lapangan adalah penting karena negara-negara dapat memulai hambatan perdagangan untuk impor produk ayam dari daerah di mana virus virulen ada. Oleh karena itu, ILT ringan lebih umum sering disebut dengan "vaccinal" ILT meskipun pengujian PCR-RFLP tidak selalu dilakukan.

Di Eropa, 104 isolat lapangan yang dikumpulkan selama 35 tahun dari delapan negara yang berbeda. Isolat virus ini dianalisis dengan PCR-RFLP menargetkan gen TK dan itu menunjukkan bahwa mereka terpisah menjadi 3 kelompok genetik. Hal ini juga menunjukkan bahwa 98 isolat lapangan ini memiliki pola RFLP sama dengan strain vaksin [59]. Di Australia, PCR-RFLP digunakan untuk menganalisis ILTV gG, TK, ICP4, ICP18.5 dan gen ORFB-TK di 20 strain. Isolat ini dapat dibedakan menjadi lima kelompok genetik. Beberapa isolat terkait erat dengan strain vaksin [64].

Pergi ke:
KEKEBALAN DAN VAKSINASI
Vaksin ILT menginduksi perlindungan terhadap tantangan dalam 1 minggu. Imunitas humoral tidak respon imun besar terhadap ILTV pada ayam. Penelitian diverifikasi pentingnya imunitas seluler (CMI) dalam perlawanan terhadap ILTV. Percobaan dirancang di mana ayam yang bursectomized dengan cyclophsophamide dan metode bedah untuk memblokir respon imun humoral. Divaksinasi ayam bursectomized mengembangkan respon CMI protektif terhadap tantangan ILTV virulen [16]. Ini menegaskan bahwa CMI adalah lebih penting daripada imunitas humoral. Selain itu, respon CMI lokal dalam trakea menghasilkan perlindungan dari ILTV tantangan pada ayam bursectomized. Antibodi mukosa yang tidak penting untuk ketahanan untuk menantang [65].

Vaksinasi efektif dalam mencegah infeksi ILTV. Namun, virus vaksin ILT dapat membuat ayam pembawa laten terinfeksi. Operator-operator laten merupakan sumber untuk penyebaran virus ke ternak non-divaksinasi. Oleh karena itu, dianjurkan bahwa vaksin ILT digunakan hanya di daerah endemik. Yang paling digunakan saat ini strain vaksin ILT yang dilemahkan TCOs diubah-live atau virus CEO. Dibandingkan dengan perlindungan yang diberikan oleh TCO dan vaksin CEO, tidak ada perbedaan yang signifikan dalam kekebalan ayam di 10 pos wk vaksinasi. Namun, ketika ayam lebih dari 20 minggu usia divaksinasi, vaksin CEO diinduksi perlindungan yang lebih baik daripada TCO vaksin [66]. Metode untuk pemberian vaksin hidup adalah tetes mata, air minum, dan semprot aerosol. Rute air minum menimbulkan beberapa masalah dalam bahwa ayam mungkin tidak menerima cukup virus pada organ target (sel epitel hidung) dan kualitas air minum bervariasi antara rumah-rumah unggas. Dengan demikian, burung-burung ini mungkin gagal untuk mengembangkan kekebalan protektif dan mungkin telah bergulir (terus-menerus) reaksi [67]. Di sisi lain, dengan semprotan rute, beberapa ayam dapat mengembangkan reaksi parah, karena dosis berlebih dari tetesan kecil dapat menembus jauh ke dalam saluran pernapasan [68].

Laporan menunjukkan bahwa vaksin dimodifikasi-live meningkatkan virulensi mereka dengan bagian burung-to-burung. Serial passaged vaksin ILT diubah-live in vivo selama 35 generasi. Setelah bagian ke-6, saring vaksin ini diproduksi tanda-tanda klinis yang parah pada ayam ditantang. Selanjutnya, analisis restriksi endonuklease dari genom virus antara bagian awal dan akhir menunjukkan tidak ada perbedaan antara isolat. Vaksin CEO memiliki kecenderungan untuk meningkatkan virulensi lebih dari vaksin TCO, ketika melewati pada ayam [69,70]. Investigasi ILTV isolat yang dikumpulkan dari seluruh dunia dianalisis dengan PCR-RFLP. Mereka mengungkapkan bahwa beberapa bidang isolat virulen saat ini adalah terkait erat dengan strain vaksin. Ini berarti bahwa bidang isolat berasal dari strain vaksin setelah bagian belakang pada ayam [43,52,57-60].

Baru-baru ini vaksin rekombinan telah dikomersialisasikan. Termasuk gen ILTV parsial dimasukkan ke fowlpox dan HVT genom dimodifikasi. Sebuah vaksin rekombinan fowlpox, yang berisi ILTV glikoprotein B (gB) gen, ditunjukkan untuk mendorong perlindungan terhadap strain virulen [71]. Virus fowlpox lain rekombinan, yang berisi ILTV gB dan UL 32 gen, menunjukkan beberapa keberhasilan untuk memberikan perlindungan terhadap tantangan strain virulen melalui sayap administrasi web [72]. Dua berlisensi vaksin ILT rekombinan komersial yang digunakan di Amerika Serikat. Satu diproduksi oleh CEVA (Biomune Perusahaan, Lenexa KS), yang menggunakan poxvirus unggas sebagai vektor dengan penyisipan ILTV gB dan UL 32 gen. Yang lainnya diproduksi oleh Intervet (Intervet, Inc Millsboro, DE), di mana ILTV gI dan GD gen dikloning ke HVT. Ketika ini berlisensi vaksin ILT rekombinan komersial divaksinasi oleh embrio 18-d-tua di injeksi ovo, mereka mengurangi tanda-tanda klinis, tetapi tidak replikasi virus setelah tantangan [73]. Vaksin rekombinan ILTV tidak menyebabkan infeksi laten dan pengembalian mematikan. Meskipun vaksin rekombinan lebih aman dari vaksin hidup yang dikembangkan sebelumnya, biaya mereka meningkat dan fakta bahwa mereka harus disuntikkan telah membatasi penggunaannya.

Beberapa studi mencoba untuk mengembangkan kandidat vaksin ILT baru dengan penghapusan gen. Beberapa ILTVs, dengan menghapus gen virus virulen, mempertahankan kemampuan mereka untuk menginduksi respon imun tanpa menghasilkan tanda-tanda klinis dan latency. Virus rekombinan dengan dihapus GJ, TK, dan, gen UL0 mudah menunjukkan pelemahan, dan dapat digunakan untuk produksi vaksin [74-76]. The ILTV gG-kekurangan, yang dikelola oleh salah satu tetes mata atau rute air minum untuk 3-minggu-tua-spesifik patogen-bebas burung, menginduksi kekebalan yang memadai terhadap tantangan. Oleh karena itu, mungkin dapat gunakan untuk vaksinasi skala besar. Namun, penelitian lebih lanjut perlu dilakukan untuk menentukan perlindungan vaksin gG-kekurangan ini pada peternakan ayam komersial [77]. Ada juga gen ILTV non-esensial, yang dihapus untuk menguji kemampuan mereka sebagai vaksin. Mutan ILT, yang memiliki lima unik ORF AE dihapus, dihapus Gn dan gM, dan protein fluorescent hijau dimasukkan ke dalam gen UL50 dihapus wilayah [78-80]. The gC dihapus ILTV mengakibatkan penurunan virulensi dan itu bisa menjadi vaksin penanda [81]. Ini ILTVs rekombinan dan gen-dihapus dapat digunakan sebagai kandidat untuk membedakan divaksinasi dari burung lapangan terinfeksi. Vaksin rekombinan digunakan ILTV sebagai vektor virus mengandung H5 atau H7 gen AIVs sangat patogen. Ini rekombinan ILTV dapat melindungi burung dari ILT dan patogen AIV [76,82]. Baru-baru ini, sebuah vektor ILTV baru memiliki gen HPAI H5 dimasukkan ke dalam wilayah gen UL50 dihapus. Virus rekombinan ini dilindungi dari burung H5N1 homolog dan heterolog dan H5N2 virus tantangan [83,84]. Vaksin DNA gen ILTV gB dikembangkan. Gen gB dikombinasikan dengan ayam IL-18 sebagai vektor bicistronic diinduksi perlindungan yang lebih baik di ayam dari ILTV tantangan dari gen gB vektor monosistronik saja [85]. Menggunakan ILTV gB plasmid gen vaksin DNA dan ayam IL-18 plasmid DNA sebagai T helper-1 respon imun adjuvant diinduksi, yang melindungi burung dari virulen ILTV tantangan [86].

Pencegahan dan pengendalian infeksi ILTV menggunakan manajemen kandang ayam

Hal ini penting untuk menghindari kontak antara divaksinasi atau pulih virus bidang unggas yang terinfeksi dengan ayam yang tidak divaksinasi. Hal ini juga penting untuk menghilangkan fomites terkontaminasi untuk pencegahan dan pengendalian infeksi ILTV. Untuk mengontrol wabah ILTV, meningkatkan biosekuriti dan praktek manajemen yang diperlukan. Biosecurity termasuk protokol dan prosedur untuk mencegah patogen menginfeksi dan menularkan penyakit oleh manusia, serangga, burung liar, atau hewan lainnya [87]. Sebuah studi menemukan bahwa sampah pemanasan pada 38 ° C selama 24 jam, menggunakan perawatan sampah komersial, dan in-house kompos selama 5 d mengurangi virus ini di bawah tingkat deteksi [88,89]. Diagnosis cepat, prosedur vaksinasi yang sesuai, dan kerjasama antara pemerintah dan industri sangat penting untuk kontrol ILT. Pada tahun 2005, California memiliki "LT vaccinal" wabah di peternakan broiler. Meskipun perusahaan-perusahaan meningkatkan biosekuriti dan vaksinasi di peternakan ini, mereka tidak berhenti ayam dari terinfeksi ILT. Oleh karena itu, strategi depopulasi, downtime diperpanjang, dan biosecurity yang ketat dieliminasi ILT di peternakan ini dilakukan [90]. Baru-baru ini, untuk mengendalikan wabah, sistem informasi geografis digunakan untuk memberikan informasi daerah untuk biosekuriti, karantina, vaksinasi, dan rute ke pabrik pengolahan. Agen pemerintah, perusahaan industri, petani, dan dokter hewan harus bekerja sama dan merancang program untuk pengendalian wabah [91].

Pergi ke:
KESIMPULAN
ILT terus sebagai penyakit unggas penting ekonomis. Langkah-langkah pengelolaan rumah dan biosekuriti harus dilakukan untuk pengendalian penyakit. Untuk pemberantasan ILT, vaksin dimodifikasi-live perlu diganti oleh peningkatan vaksin rekombinan untuk pencegahan infeksi laten dan pengembalian mematikan.

Pergi ke:
Catatan kaki
Peer reviewer: Jean-Michel Garcia, PhD, HKU-Pasteur Research Centre, Translational kelompok Penelitian Leader, Dexter HC Man Building, 8, Sassoon Road, Pokfulam, Hong Kong, Cina

S-Editor Wang JL L-Editor A E-Editor Zheng XM

Pergi ke:
Referensi
1. McGeoch DJ, Dolan A, Ralph AC. Menuju filogeni komprehensif untuk herpesviruses mamalia dan burung. J Virol. 2000; 74:10401-10406. [PMC gratis artikel] [PubMed]
2. Davison AJ, Eberle R, Hayward GS, McGeoch DJ, Minson AC, Pellett PE, Roizman B, Studdert MJ, Thiry E. Herpesviridae. In:. Fauquet CM, Mayo MA, Maniloff J, U Desselberger, bola LA, et al, editor. Virus Taksonomi: Kedelapan Laporan Komite Internasional Taksonomi Virus. San Diego: Elsevier Academic Press; Tahun 2005. Hlm 193-212.
3. McGeoch DJ, Rixon FJ, Davison AJ. Topik dalam genomik virus herpes dan evolusi. Virus Res. 2006; 117:90-104. [PubMed]
4. May HG, Tittsler RP. Trakeo-laryngotracheotis pada unggas. J Am Vet Med Assoc. 1925; 67:229-231.
5. Thureen DR, Keeler CL. Psittacid herpesvirus 1 dan infeksi virus ILT: analisis urutan genom Perbandingan dari dua alphaherpesviruses burung. J Virol. 2006; 80:7863-7872. [PMC gratis artikel] [PubMed]
6. Lee SW, Markham PF, Markham JF, Petermann I, Noormohammadi AH, Browning GF, Ficorilli NP, Hartley CA, Devlin JM. Urutan genom lengkap pertama dari infeksi virus ILT. BMC Genomics. 2011; 12:197. [PMC gratis artikel] [PubMed]
7. Lee SW, Devlin JM, Markham JF, Noormohammadi AH, Browning GF, Ficorilli NP, Hartley CA, Markham PF. Analisis komparatif dari urutan genom lengkap dari dua asal Australia vaksin hidup yang dilemahkan dari infeksi virus ILT. Vaksin. 2011; 29:9583-9587. [PubMed]
8. Spatz SJ, Volkening JD, Keeler CL, Kutish GF, Penyulingan Anggur Riblet SM, Boettger CM, Clark KF, Zsak L, Afonso CL, Mundt ES, et al. Analisis genom penuh Perbandingan empat menular virus ILT (Gallid herpesvirus-1) virulen isolat dari Amerika Serikat. Gen virus. 2012; 44:273-285. [PubMed]
9. Johnson MA, Prideaux CT, Kongsuwan K, Tyack SG, Sheppard M. ICP27 segera gen awal, glikoprotein K (K) dan homolog helikase DNA dari infeksi virus ILT (gallid herpesvirus 1) SA-2 ketegangan. Arch Virol. 1995; 140:623-634. [PubMed]
10. Johnson MA, Tyack SG. Evolusi molekuler dari infeksi virus ILT (ILTV, herpesvirus gallid 1): contoh kuno dari Alphaherpesviridae. Vet Microbiol. 1995; 46:221-231. [PubMed]
11. Meulemans G, Halen P. Beberapa fisiko-kimia dan sifat biologi dari strain Belgia (U 76/1035) dari infeksi virus ILT. Pathol Avian. 1978; 7:311-315. [PubMed]
12. Jorden FTW. Sebuah tinjauan literatur tentang Laringotrakheitis menular (ILT) Avian Dis. 1966; 10:1-26.
13. Bagust TJ, Jones RC, Guy JS. Avian Laringotrakheitis menular. Rev Sci Tech. 2000; 19:483-492. [PubMed]
14. Schalm OW, Pantai JR. Hambatan dari virus Laringotrakheitis menular faktor fisik dan kimia tertentu. J Infect Dis. 1935; 56:210-223.
15. Neighbor NK, Newberry LA, Bayyari GR, Skeeles JK, Beasley JN, McNew RW. Pengaruh microaerosolized hidrogen peroksida pada patogen bakteri dan virus unggas. Anak ayam Sci. 1994; 73:1511-1516. [PubMed]
16. Fahey KJ, Bagust TJ, York JJ. Infeksi virus herpes Laryngotracheitis dalam ayam: peran antibodi humoral dalam kekebalan terhadap infeksi tantangan dinilai. Pathol Avian. 1983; 12:505-514. [PubMed]
17. Crawshaw GJ, Boikot BR. Laringotrakheitis menular di merak dan burung. Avian Dis. 1982; 26:397-401. [PubMed]
18. Portz C, Beltrão N, Furian TQ, Júnior AB, Macagnan M, Griebeler J, Lima Rosa CA, Colodel EM, Driemeier D, Kembali A, et al. Infeksi alami kalkun oleh infeksi virus ILT. Vet Microbiol. 2008; 131:57-64. [PubMed]
19. Hayles LB, Macdonald KR, Newby WC, Wood CW, Gilchrist EW, MacNeill AC. Epizootiology dari Laringotrakheitis menular di British Columbia 1971-1973. Bisa Vet J. 1976; 17:101-108. [PMC gratis artikel] [PubMed]
20. Seddon HR, percobaan Hart L. Kemudahan penularan dengan virus Laringotrakeitis unggas. Aust Vet J. 1936; 12:13-16.
21. Burnet F. Penyebaran virus Laringotrakheitis menular pada CAM mengembangkan telur. Br J Ex Pathol. 1934; 12:179-198.
22. Brandly CA. Studi pada virus filterable tertentu. I. Faktor prihatin dengan propagasi telur cacar unggas dan Laringotrakheitis menular. J Am Vet Med Assoc. 1937; 90:479-487.
23. Srinivasan VA, Mallick BB. Studi pada beberapa inokulasi dari infeksi virus ILT pada ayam. India Vet J. 1977; 54:1-5.
24. Hughes CS, Jones RC. Perbandingan metode budaya untuk isolasi utama infeksi virus ILT dari bahan lapangan. Pathol Avian. 1988; 17:295-303. [PubMed]
25. Chang PW, Jasty V, Fry D, Yates VJ. Replikasi sel-budaya-dimodifikasi menular virus ILT pada ayam eksperimental terinfeksi. Avian Dis. 1973; 17:683-689. [PubMed]
26. Schnitzlein WM, Radzevicius J, Tripathy DN. Perbanyakan menular virus ILT dalam garis sel hati burung. Avian Dis. 1994; 38:211-217. [PubMed]
27. Ou S, Giambrone JJ, Macklin KS. Deteksi virus vaksin Laringotrakheitis menular di saluran air dan efektivitas pembersih untuk menonaktifkan virus. J Appl anak ayam Res. 2011; 20:223-230.
28. Ou SC, Giambrone JJ, Macklin MS. Deteksi infeksi virus ILT dari DARKLING kumbang dan panggung mereka yang belum matang (mealworm lebih rendah) oleh kuantitatif polymerase chain reaction dan isolasi virus. J Appl anak ayam Res. 2012; 21:33-38.
29. Kingsbury FW, Jungherr EL. Transmisi langsung dari Laringotrakheitis menular pada ayam. Avian Dis. 1958; 2:54-63.
30. Johnson YJ, Gedamu N, Colby MM, Myint MS, Steele SE, Salem M, Tablante NL. Terbawa angin transmisi Laringotrakheitis menular antar operasi unggas komersial. Int J anak ayam Sci. 2005; 4:263-267.
31. Rodríguez-Avila A, Oldoni I, Penyulingan Anggur Riblet S, García M. Replikasi dan transmisi hidup yang dilemahkan menular Laringotrakeitis virus (ILTV) vaksin. Avian Dis. 2007; 51:905-911. [PubMed]
32. Bagust TJ. Laryngotracheitis (Gallid-1) infeksi virus herpes pada ayam. 4. Latency pembentukan oleh strain liar dan vaksin dari virus ILT. Pathol Avian. 1986; 15:581-595. [PubMed]
33. Williams RA, Bennett M, Bradbury JM, Gaskell RM, Jones RC, Jordan FT. Demonstrasi situs latency dari infeksi virus ILT menggunakan polymerase chain reaction. J Gen Virol. 1992; 73 (Pt 9) :2415-2420. [PubMed]
34. Guy JS, Garcia M. Laryngotracheitis. In:. Saif YM, Fadly AM, Glisson JR, McDougald LR, Nolan LK, et al, editor. Penyakit unggas. Ed 11. Ames: Iowa State University Press; 2008. Hlm 137-152.
35. Hinshaw WR, Jones EE, Graybill HW. Sebuah studi mortalitas dan produksi telur dalam kelompok terpengaruh dengan Laringotrakeitis. Anak ayam Sci. 1931; 10:375-382.
36. Nair V, Jones RC, Gough RE. Herpesviridae. In:. Pattison M, McMullin PF, Bradbury JM, Alexander DJ, et al, editor. Penyakit unggas. Ed 6. Philadelphia: Sunders Elsevier; 2008. Hlm 267-271.
37. Goodwin MA, Smeltzer MA, Brown J, Resurrección RS, Dickson TG. Perbandingan histopatologi dengan tes antibodi immunofluorescent langsung untuk diagnosis Laringotrakheitis menular pada ayam. Avian Dis. 1991; 35:389-391. [PubMed]
38. Guy JS, Barnes HJ, Smith LG. Diagnosis cepat Laringotrakheitis menular menggunakan prosedur immunoperoxidase berbasis antibodi monoklonal. Pathol Avian. 1992; 21:77-86. [PubMed]
39. Jordan FTW, Chubb RC. Teknik difusi gel agar dalam diagnosis Laringotrakheitis menular (ILT) dan diferensiasi dari cacar unggas. Res Vet Sci.

Pathol Avian. [PubMed]